gRNA——提高CRISPR基因编辑实验效率的关键！

CRISPR-Cas9基因编辑技术就是通过人工设计的 sgRNA（guide RNA）来识别目的基因组序列，并引导 Cas9 蛋白酶进行有效切割 DNA 双链，形成双链断裂，损伤后修复会造成基因敲除或敲入等，最终达到对基因组DNA 进行修饰的目的。

Matthew H Porteus等人在nature biotechnology上发表了Chemically modified guide RNAs enhance CRISPR-Cas genome editing in human primary cells,该研究通过对合成的sgRNA进行化学修饰，提高了人类原始T细胞和CD34+造血干细胞和祖细胞（HSPC）的基因组编辑效率。将化学修饰的sgRNA与Cas9 mRNA或蛋白质共同递送，是一种有效的递送方法，而且不存在与DNA递送相关的毒性。这是一种简单而有效的方法，有促进CRISPR-CAS技术在生物技术和治疗应用方面发展的潜力。

研究内容

为了测试化学合成的sgRNA用于基因组编辑的效用，作者对sgRNA进行三种不同的化学修饰，包含M、MS、MSP，加在5’和3’末端的三个核苷酸上，并评估其的最终效果。作者选择了三个已经被细胞系中具有高基因编辑频率的sgRNA靶向的人类基因：IL2RG，HBB，和CCR5。结果表明，通常情况下，化学修饰的sgRNA保持了高度的特异性。在靶和脱靶比率的差异表明sgRNA的化学变化具有调节活性的可能性。

为了进一步探索化学修饰的人类细胞系中的sgRNA，作者转向一个全RNA递送平台，联合递送sgRNA和编码Cas9的mRNA。并通过核转染的方式联合或连续递送Cas9和各种靶向IL2RG的合成sgRNA，探索化学修饰是否对sgRNA活性的半衰期有影响。之后，作者比较了未修饰和MS修饰的sgRNA在脱靶位点的活性。研究发现，当化学修饰的sgRNA与Cas9 mRNA共同递送或作为RNP递送时，在人类细胞系中显示出比未修饰的sgRNA更具优势的基因编辑。

图1  化学修饰合成的sgRNA促进人类细胞系K562中高频率的突变和同源重组（HR）。

接下来，作者在原代细胞中测试了化学修饰的sgRNA，发现与质粒核转染相比，修饰后的sgRNA对细胞存活和增殖的影响很小。还在未受刺激的T细胞中测试了MS修饰的sgRNA，与刺激的T细胞相比，未刺激的T细胞在供者之间表现出更高的变异性。并发现针对IL2RG和HBB的化学修饰的sgRNA在从动员的外周血中分离出来的CD34+HSPC中具有活性。

图2  化学修饰的sgRNA促进了人类T细胞和CD34+造血干细胞和祖细胞(HSPC)的高频率基因裂解。

研究结果

在这项研究中，作者证明了化学合成的sgRNA可以有效地用于靶向基因组编辑，并且证明了化学修饰的sgRNA可以显著提高人类原代T细胞和CD34+  HSPC的基因组编辑效率。化学合成和修饰的sgRNA比表达或体外转录的sgRNA更具优势，包括:

（1）提高疗效。

（2）用于生物技术和治疗应用的高纯度sgRNA的稳定和可持续生产。

（3）与通常分别用于sgRNA的质粒表达或体外转录的U6或T7启动子对第一转录核苷酸施加的限制相比，sgRNA设计具有更大的灵活性，

（4）与基于DNA质粒的系统相比，在原代细胞中具有更低的细胞毒性，使一个仅具有高活性的RNA或RNP CRISPR平台成为可能。

艾迪基因

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